利用微流體能從血液中，分離出完整的活細菌，並且實現機械溶血

新興單細胞診斷技術依賴於從複雜的生物基質中快速有效地分離細菌的潛力。在表在《微系統與奈米工程》上的一項研究中，美國機械工程、化學生物分子工程和生物工程跨學科部門的Jung Y。 Han和同事開發了一種利用微流體多孔二氧化矽單體從全血液中分離出完整活菌的裝置。實現了機械溶血，同時提供完整和活的細菌透過單體大小為基礎的細菌分離和選擇性裂解通道。

研究探索了整體形態、幾何形狀和流動條件對細胞裂解的影響，以及允許多種革蘭氏陰性菌和革蘭氏陽性菌選擇性細胞裂解和選擇性透過的流動狀態。採用的技術結合單細胞拉曼光譜可以快速製備樣品並進行細菌分析。該研究提供了獨特的樣品製備步驟，以支援快速和無培養的細菌分析，在醫療點生物醫學裝置的應用。血液中的細菌可導致敗血症、組織感染等嚴重狀況，需要及早發現血源性細菌才能有效治療。

利用定點診斷快速識別細菌的能力，可以極大地提高早期感染最佳治療的臨床潛力。現有黃金標準細菌特徵是基於表型細胞培養分析和需要至少24小時收集樣本、分析在診斷、臨床微生物學實驗室。現有技術是穩定和便宜的，但不能生成及時指導治療的初始階段結果。

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在本研究中，探索了微流控裝置與多孔二氧化矽單體作為簡單的通流元件，用於選擇性血細胞分析和細菌的完整分離，單體是由具有流體扭曲路徑開放細胞形態組成的多孔材料。

科學家可以在細胞灌注過程中透過高機械錶面應力來控制整體孔的形態，從而實現細胞的機械溶血，同時允許完整、活的細菌透過彎曲流動路徑進行無培養分離。研究對革蘭氏陽性菌和革蘭氏陰性菌採用全血流動條件下細菌選擇性傳代的方法，儘管菌株不同。高通量選擇性單核細胞裂解技術與拉曼光譜等強大的分析方法相結合，可以在單個細胞水平上對全血中的細菌進行無培養分析。研究對之前的二氧化矽單體合成工藝進行了改進，然後水解和縮合二氧化矽，在低溫下形成二氧化矽玻璃。

為了製備二氧化矽單體，科學家們使用了由烷基矽酸鹽、聚乙二醇（PEG）作為致孔劑、尿素作為羥基離子來源的前驅體溶液，以儘量減少異質性和乙酸。當優化合成工藝時，得到的單體是均勻的，並且很好地固定在矽毛細管壁上。科學家們測量了最終骨骼整體結構的厚度，並用高效液相色譜法計算了其滲透性，以控制實驗條件。為了最大限度地減小內部變化，將產生的毛細管切割成5釐米長的段，在使用前測試滲透率。

然後研究人員開發了兩種互補的低通量和高通量操作方法，將二氧化矽單體整合到微流體系統中。為了實現低通量操作，科學家們在熱塑性微流體晶片中嵌入了含有單體的毛細管段，以在整合過程中保護單體。對於高通量選擇性裂解，使用了微流體裝置中具有較大橫截面積的單體。完整的製作方法為全血灌注過程中無洩漏操作提供了良好可靠性。研究人員選擇陰溝腸桿菌（革蘭氏陰性，桿狀菌）和3種革蘭氏陽性菌作為原理驗證，探討其傳輸率；乳酸乳球菌、黃體微球菌和枯草芽孢桿菌。

在實驗過程中，用不同幾何形狀和流動條件的微流體單體灌注細菌溶液，利用動態光散射（DLS）檢測細菌的透過和血細胞的裂解。例如，純化後的陰溝腸桿菌經單塊體灌注後，DLS峰沒有明顯變化，表明細菌的通道完整。科學家們證明了多孔整體器的長度對紅細胞裂解效率的影響。結果表明，當單核細胞長度大於1mm時，紅細胞裂解效率顯著提高。也研究了白細胞（WBCs）在單核細胞裝置執行過程中的命運，細胞在不被類似RBCs的裂解的情況下無法透過單核細胞。

從技術上講，紅細胞變形為盤狀，透過單核細胞，導致膜張力顯著增加，導致紅細胞裂解。相比之下，細菌細胞的尺寸與單粒石孔隙相似，因此成功透過而不破裂需要更少的細胞壁膨脹。科學家們優化了裝置引數，使不同細菌能夠承受高水平的膜應力而不破裂。進一步的發展確保了細菌的完整傳代而不降解，並具有生存能力。為了獲得高通量細菌通道，科學家們稀釋了毛細管裝置中的血液。然而，作為另一種選擇，它們也可以擴大整體血液溶解的能力。

該裝置處理超過400μL摻入細菌的全血，然後由於細胞裂解導致的堵塞以及由於多孔基質內捕獲的完整白細胞（WBC）而顯示出背壓的顯著增加。為了定位目標細菌，將一個沉積在玻璃載玻片上的樣品，該樣品經過了整塊處理。透過手工掃描光學探針對樣品進行單細胞拉曼分析。研究人員希望在未來利用選擇性裂解技術，結合共焦拉曼顯微鏡來改進在確定的感興趣的位置，以低濃度檢測感興趣菌株的過程。共焦拉曼顯微鏡工具與新興的小型化手持系統結合起來，為快速便攜的護理點裝置鋪平道路。